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得不到陽性克隆?可能是忽視了這些細節(jié)……_91化工儀器網(wǎng)

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放大字體  縮小字體    發(fā)布日期:2019-09-02  來源:儀器信息網(wǎng)  作者:Mr liao  瀏覽次數(shù):432
核心提示:得不到陽性克?。靠赡苁呛鲆暳诉@些細節(jié) 過去,提起 分子克隆 或 載體構建 這兩個詞,大家可能想到的是傳統(tǒng) 酶切酶連法 ,即用限制性內切酶產(chǎn)生黏性末端,通過堿基互補配對,連接兩個片段的克隆方法。近年來, 同源重組技術 逐漸受到科研人員的歡迎,如翊圣Hieff Clone 一步法快速克隆技術。相比之下,同源重組技術操作更加簡單,不受到酶切位點的限制,可一次進行多個片段的拼接,大大的提高了克隆效率。雖然同源重組技術操作簡單,但畢竟實驗過程是環(huán)環(huán)相扣的,一旦某個細節(jié)處理不好,都可能導致實驗失敗。為此,小編精心整理

得不到陽性克???可能是忽視了這些細節(jié)

過去,提起 分子克隆 或 載體構建 這兩個詞,大家可能想到的是傳統(tǒng) 酶切酶連法 ,即用限制性內切酶產(chǎn)生黏性末端,通過堿基互補配對,連接兩個片段的克隆方法。

近年來, 同源重組技術 逐漸受到科研人員的歡迎,如翊圣Hieff Clone 一步法快速克隆技術。相比之下,同源重組技術操作更加簡單,不受到酶切位點的限制,可一次進行多個片段的拼接,大大的提高了克隆效率。

雖然同源重組技術操作簡單,但畢竟實驗過程是環(huán)環(huán)相扣的,一旦某個細節(jié)處理不好,都可能導致實驗失敗。為此,小編精心整理了同源重組實驗的常見問題,并給出了可能的原因和解決方案。希望新手們在遇到類似問題時可快速判斷可能的原因,節(jié)省時間,更順利的完成實驗。

常見問題分類:

 無克隆。

 假陽性。

 菌落PCR無條帶。

 酶切鑒定多條帶。

無克隆

出現(xiàn)無克隆的現(xiàn)象,可能的原因主要是連接不成功或連接成功,但轉化失敗。具體原因分別如下:

1、 連接不成功。

可能原因

解決方法

1)引物設計錯誤。

1)設計原則:同源臂(15-25 bp,GC含量40-60%)+酶切位點(根據(jù)實驗需求保留或刪除)+基因特異性引物。

2)判斷方法:可用翊圣無縫克隆引物設計軟件核對,鏈接:h、t、t、p :122.112.245.84:8080/hieff-clone/

2)載體與目的片段使用比例失調。

1)載體和目的片段濃度測定方法:常用吸光度法或瓊脂糖電泳法。

2)載體與目的片段添加比例:

①單片段建議:最適載體與目的片段摩爾比為1:2-1:3,載體使用量為0.03 pmol;目的片段使用量為0.06-0.09 pmol。

②多片段建議:最適DNA使用量為每片段(含線性化載體)0.03 pmol。

3)載體與目的片段不純。

1)推薦對線性化載體、PCR產(chǎn)物進行膠回收純化。

2)純化產(chǎn)物建議溶解在pH8.0的ddH2O中保存。

3)若為未純化的DNA,加入總體積不超過反應體系體積1/5。

4)操作問題或試劑盒失效。

建議做試劑盒附帶的陽性對照實驗。判斷方法:

1)若陽性對照有克隆并檢測為陽性,則排除試劑盒問題。

2)若陽性對照無克隆,可能是操作問題或試劑盒失效,建議換其他人或換試劑盒進行陽性對照實驗,進一步確定問題。

2、 連接成功,但無克隆。

可能原因

解決方法

1)感受態(tài)細胞效率低,<107 cfu/ g。

建議用轉化效率大于107 cfu/ g的感受態(tài)細胞。

判斷方法:可轉化0.1ng質粒(如PUC19),觀察克隆數(shù),若生長大于1000個菌斑,則轉化效率大于107 cfu/ g。

2)抗生素種類錯誤。

建議將未線性化載體轉化涂板。

判斷方法:若未長克隆,則可能是抗性種類錯誤或濃度過高。需檢查質粒圖譜確認抗性或確認最適濃度。

假陽性

出現(xiàn)假陽性的情況,主要表現(xiàn)有兩種,克隆不含插入片段或含有錯誤的插入片段。具體原因分別如下:

1、克隆不含插入片段(空載)。

可能原因

解決方法

1)載體線性化不完全。

建議將已制備的線性化的載體轉化涂板。  

判斷方法:如果長克隆較多,則表示線性化不完全。建議優(yōu)化酶切體系。

2)體系中混入了相同抗性的環(huán)狀質粒。

1)產(chǎn)生原因:

①以反向PCR方式進行載體線性化,殘留環(huán)狀質粒模板導致。

②目的基因PCR模板為與載體相同抗性的環(huán)狀質粒,殘留環(huán)狀 質粒模板導致。

2)判斷方法:將已制備的線性化載體和目的片段分別轉化涂板,如果長克隆較多,則表示有相同抗性的環(huán)狀質?;烊?。建議PCR擴增產(chǎn)物先用DpnI 消化模板后,再進行膠回收純化處理或直接進行膠回收純化處理,去除殘留的環(huán)狀模板質粒導致的假陽性。

2、克隆含有錯誤的插入片段。

可能原因

解決方法

1)PCR產(chǎn)物混有非特異擴增產(chǎn)物。

1)可能情況:PCR擴增目的基因時有非特異條帶出現(xiàn),未進行膠回收純化。

2)解決方案:

①優(yōu)化PCR體系,提高特異性;

②膠回收PCR產(chǎn)物;

③鑒定更多的克隆。

2)片段缺失。

1)可能情況:載體或片段有多個同源重復序列。

2)解決方案:借助網(wǎng)站或軟件進行序列比對(如NCBI, Vector NTI等)。

菌落PCR無條帶

出現(xiàn)菌落PCR無條帶的現(xiàn)象,可能與PCR擴增或重組連接有關,具體原因分別如下:

可能原因

解決方法

1)菌落PCR引物錯誤。

建議用載體的通用引物進行菌檢,或至少使用一條通用引物。

2)PCR體系或程序不合適。

1)可能情況:用目的片段引物和載體通用引物擴增都無產(chǎn)物。

2)解決方案:

①優(yōu)化PCR體系、程序;

②提取質粒,以質粒做模板PCR驗證;

③換酶切法鑒定克隆。

3)連接失敗。

1)判斷方法:目的引物或一端載體通用引物,另一端目的引物擴增無條帶,但載體通用引物擴增有條帶,且大小符合空載。

2)可能原因:載體線性化不完全。建議優(yōu)化酶切體系。

酶切鑒定多條帶

可能原因

解決方法

重組載體上有多個相同的酶切位點。

1)換其他酶切位點進行酶切鑒定;

2)更換克隆鑒定方法,如換成菌落PCR或測序鑒定。

 

以上同源重組的常見問題您中槍過嗎?若有,快來 對號入座 吧。如果還有其它更多關于一步法快速克隆的問題,歡迎留言或來電。

 

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655.00

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