（一）雙縮脲測定法
1．原理  蛋白質(zhì)中的肽鍵有雙縮脲反應(yīng)，在堿性溶液中與二價(jià)銅離子形成藍(lán)紫色的絡(luò)合物，在一定的范圍內(nèi)，顏色的深淺與蛋白質(zhì)的含量成正比。此法特異性強(qiáng)，游離的氨基酸、小肽和核酸均不產(chǎn)生這種反應(yīng)，但此法不夠敏感，僅能測出毫克水平。
    2．試劑配制
     硫酸銅（CuSO4 5H2O）               1.50g
酒石酸鉀鈉                           5.00g
H2O                                500.0ml  
10％氫氧化鈉（不含硫酸鈉）          300ml
H2O           加至                 1 000ml
此溶液可長期保存，如產(chǎn)生暗紅色沉淀，則應(yīng)廢棄重配。
    3．標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
     ⑴ 準(zhǔn)確稱取牛血清白蛋白1.0g（必要時(shí)須首先采用凱氏定氮法測定牛血清白蛋白制品中實(shí)際純蛋白含量，然后換算），以生理鹽水配成1％的濃度。
⑵ 將1％的牛血清白蛋白按表8-1進(jìn)行稀釋：
表8-1 牛血清白蛋白稀釋方法表
成     分
試            管             號
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
1％蛋白液（ml）
1.0
.09
0.8
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
－
蛋白含量（mg）
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1
－
生理鹽水（ml）
0.5
0.6
0.7
0.8
0.9
1.0
1.1
1.2
1.3
1.4
1.5
雙縮脲試劑（ml）
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
試劑蛋白含量（mg）
8.0
7.2
6.4
5.6
4.8
4.0
3.2
2.4
1.6
0.8
0
注：1％牛血清白蛋白，經(jīng)凱氏定氮測定含純蛋白為80％。
⑶ 混勻后于室溫放置0.5h～1h，光電比色（540nm），順序由低濃度至高濃度，每管測3次，求其平均值。
⑷ 以O(shè)D值為縱坐標(biāo)，蛋白含量為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
4．樣品測定
⑴ 取樣品0.1ml，加生理鹽水1.4ml。也可將樣品做1﹕10稀釋加1ml，再加生理鹽水0.5ml。
⑵ 加雙縮脲試劑4.0ml，混勻，至室溫0.5h～1h。
⑶ 另以1.5ml生理鹽水加4.0ml雙縮脲試劑作為空白對照。
⑷ 測OD540值。
⑸ 根據(jù)OD值從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。
注意：各種雙縮脲試劑的配法、加量及室溫靜置時(shí)間均有差異，一旦標(biāo)準(zhǔn)曲線制定后，樣品的測定則必須與標(biāo)準(zhǔn)曲線制定的條件一致，否則結(jié)果有差異。
（二）紫外光譜吸收法
1．原理  本法根據(jù)蛋白之中的芳香族氨基酸－色氨酸、酪氨酸在紫外光區(qū)的吸收特點(diǎn)而建立的。蛋白質(zhì)在280nm波長附近有一吸收峰，其吸收程度與這些氨基酸的含量成正比。此法靈敏度高，可測到微克水平，操作簡單，不需要加各種試劑，測完后，樣品可回收。
    2．標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
    ⑴ 用精密天平稱取牛血清白蛋白50mg，溶于50ml生理鹽水中。
    ⑵ 以生理鹽水再稀釋成每ml含0.1mg、0.2mg、0.3mg、0.4mg 0.9mg，以鹽水對照。
    ⑶ 測各管OD280值。
    ⑷ 以O(shè)D280值為縱坐標(biāo)，蛋白含量為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
    3．樣品測定
將待測樣品以鹽水適當(dāng)稀釋，在0.10mg/ml~1.00mg/ml之間，以生理鹽水為對照，測OD280值，從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。
（三）Folin酚法
    1．原理  蛋白質(zhì)中的酪氨酸與色氨酸和Folin酚試劑中的磷鎢酸、磷鉬酸作用后，在堿性條件下不穩(wěn)定，被還原成藍(lán)色的化合物（鉬藍(lán)）。因此通過比色即可測知標(biāo)本中的蛋白含量。該法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡單、靈敏度高，且不受溶液中脂多糖的干擾。
    2．試劑
    試劑甲：
A液：Na2CO3                 10.00g
      NaOH                   2.00g
      酒石酸鉀鈉（或鉀鹽鈉鹽）0.25g
     混合、溶于500ml蒸餾水中。
B液：CuSO4 5H2O               0.5g
       H2O                 100.00ml
        用前將A液50份與B液1份混合即為試劑甲。
試劑乙：
   于磨口回流瓶加入下列試劑
   Na2WO4 2H2O                100.00g
   NaMoO4 2H2O                 25.00g
   H2O                          700.00ml
   85％H3PO4                      50.00ml
   濃HCl                         100.00ml
按上回流冷凝管以小火回流10h后再加：
   硫酸鋰                       150.00g
   H2O                          50.00ml
   溴水                          數(shù)滴
開口繼續(xù)沸騰15min，驅(qū)除過量的溴，冷卻后溶液呈黃色微帶綠色（如仍呈綠色，須重復(fù)滴加液體溴步驟）。稀釋至1L，過濾，濾液置于棕色瓶保存。使用時(shí)用標(biāo)準(zhǔn)NaOH液滴定，以酚酞為指示劑，然后適當(dāng)稀釋（加水約1倍）使終濃度為1mol/L。
3．標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
⑴ 取標(biāo)準(zhǔn)牛血清白蛋白2.50mg，溶于10ml蒸餾水中，使成250 g/ml。
⑵ 按表8-2稀釋。
表8-2 標(biāo)準(zhǔn)曲線稀釋方法
成分
試          管            號
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品（ml）
0
0.2
0.2
0.4
0.1
0.6
0.6
0.8
0.8
1.0
1.0
生理鹽水（ml）
1.0
0.8
0.8
0.6
0.6
0.4
0.4
0.2
0.2
0
0
蛋白含量( g／ml)
0
50
50
100
100
150
150
200
200
250
250
⑶ 每管加試劑甲5ml，混合后室溫放置10min，再加0.50ml試劑乙（即Folin酚試劑），立即搖勻（否則顯色降低）。
⑷ 30min后測OD650nm。
⑸ 以O(shè)D為縱坐標(biāo)，蛋白含量為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
    4．樣品測定
    ⑴ 待測樣品1ml（適當(dāng)稀釋至約含25 g－250 g/ml）。
    ⑵ 加試劑甲、乙。
    ⑶ 比色、測OD650值。
⑷ 查標(biāo)準(zhǔn)曲線，求蛋白含量乘以稀釋倍數(shù)，即為樣品的蛋白含量。
（四）紫外分光測定法
A1%1cm＝13.8（IgG）(280nm)
A1%1cm＝14.5(IgM)(280nm)
蛋白質(zhì)濃度（mg/ml）=1.45OD280－0.74OD260  （此為經(jīng)驗(yàn)公式，即以不同濃度的蛋白質(zhì)和核酸混合測定的數(shù)值所建立的）。

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