RNA提取原理:

  RNA可分為信使RNA、轉(zhuǎn)運(yùn)RNA和核糖體RNA三大類，不同組織總RNA提取實(shí)質(zhì)就是將細(xì)胞裂解，釋放出RNA，并通過不同方式去除蛋白、DNA等雜質(zhì)，zui終獲得高純RNA產(chǎn)物的過程。  由于RNA樣品易受環(huán)境因素特別是RNA酶的影響而降解，提取高質(zhì)量的RNA樣品在生命科研中具有相當(dāng)?shù)奶魬?zhàn)性。對樣品的新鮮性要求非常高，獲取樣品后zui好立即提取RNA，若無條件立即實(shí)驗(yàn)，應(yīng)保存于-80℃或液氮中。

試劑：

  TRIzol，氯仿，異丙醇，75℅乙醇，無RNase的水或0.5℅SDS（溶液均需用DEPC處理過的水配制）

操作步驟:
1. 勻漿處理:

   a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進(jìn)行勻漿處理。樣品體積不應(yīng)超過TRIzol體積10℅。
   b.單層培養(yǎng)細(xì)胞 直接在培養(yǎng)板中加入TRIzol裂解細(xì)胞，每10cm2面積（即3.5cm直徑的培養(yǎng)板）加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應(yīng)根據(jù)培養(yǎng)板面積而定，不取決于細(xì)胞數(shù)。TRIzol加量不足可能導(dǎo)致提取的RNA有DNA污染。
   c．細(xì)胞懸液 離心收集細(xì)胞，每5-10 106動(dòng)物、植物、酵母細(xì)胞或1 107細(xì)菌細(xì)胞加入1ml TRIzol，反復(fù)吸打。加TRIzol之前不要洗滌細(xì)胞以免mRNA降解。一些酵母和細(xì)菌細(xì)胞需用勻漿儀處理。

2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復(fù)合物完全分離。
3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質(zhì)，脂肪，多糖或胞外物質(zhì)（肌肉，植物結(jié)節(jié)部分等）可于2-8℃10000 g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細(xì)胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時(shí)，上層有大量油脂應(yīng)去除。取澄清的勻漿液進(jìn)行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml氯仿，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000 g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機(jī)相，上層為無色水相和一個(gè)中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉(zhuǎn)移到新管中，如要分離DNA和蛋白質(zhì)可保留有機(jī)相，進(jìn)一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000 g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側(cè)和管底出現(xiàn)膠狀沉淀。移去上清。
9. 用75℅乙醇洗滌RNA沉淀。每使用1ml TRIzol至少加1ml 75℅乙醇。2-8℃不超過7500 g離心5分鐘，棄上清。
10.室溫放置干燥或真空抽干RNA沉淀，大約晾5-10分鐘即可.不要真空離心干燥，過于干燥會(huì)導(dǎo)致RNA的溶解性大大降低。加入25-200 l無RNase的水或0.5℅SDS,用槍頭吸打幾次,55-60℃放置10分鐘使RNA溶解.如RNA用于酶切反應(yīng),勿使用SDS溶液。RNA也可用100℅的去離子甲酰胺溶解，-70℃保存。

注意事項(xiàng)：
  1.從少量樣品（1-10mg組織或102-104細(xì)胞）中提取RNA時(shí)可加入少許糖原以促進(jìn)RNA沉淀。例如加800ml TRIzol勻漿樣品，沉淀RNA前加5-10 g RNase-free糖原。糖原會(huì)與RNA一同沉淀出來，糖原濃度不高于4mg/ml是不影響*鏈的合成，也不影響PCR反應(yīng)。
  2．勻漿后加氯仿之前樣品可以在-60至-70℃保存至少一個(gè)月。RNA沉淀可以保存于75% 酒精中2-8℃一星期以上或-5至-20℃一年以上。
  3．分層和RNA沉淀時(shí)也可使用臺(tái)式離心機(jī)，2600 g離心30-60分鐘。
預(yù)期產(chǎn)量：1mg組織或1 106細(xì)胞提取RNA分別為：
肝和脾6-10 g ,腎3-4 g ,骨骼肌和腦組織1-1.5 g ,胎盤1-4 g ,上皮細(xì)胞8-15 g ,成纖維細(xì)胞5-7 g 。

常見問題分析：
1.得率低：

A.樣品裂解或勻漿處理不徹底
B．RNA沉淀未完全溶解
2.后A260/A280 1.65 ：

A.檢測吸光度時(shí)，RNA樣品沒有溶于水，而溶于了TE中。低離子濃度和低pH值條件下A280值偏高
B．樣品勻漿時(shí)加的試劑量太少
C．勻漿樣品時(shí)未在室溫放置5分鐘
D．吸取水相時(shí)混入了有機(jī)相
E．RNA沉淀未完全溶解。
3.RNA降解：

A.組織取出后沒有馬上處理或冷凍
B.待提取RNA的樣品沒有保存于-60至-70℃,而保存在了-5至-20℃
C.細(xì)胞在用胰酶處理時(shí)過度
D.溶液或離心管未經(jīng)RNase去除處理
E.電泳時(shí)使用的甲醛pH值低于了3.5
4.DNA污染:

A. 樣品勻漿時(shí)加的試劑量太少
B.樣品中含有有機(jī)溶劑（如乙醇,DMSO等）,強(qiáng)緩沖液或堿性溶液
5.蛋白聚糖和多糖污染:

沉淀RNA的過程中作以下改進(jìn)可去除這些污染，步驟7中,每使用1ml TRIzol在水相中加0.25ml異丙醇和0.25ml高鹽溶液（0.8M檸檬酸鈉和1.2M NaCl）混合離心,按之前操作進(jìn)行。這種方法可使蛋白聚糖和多糖留在溶液中，高效沉淀出純RNA。從含有大量多糖的植物中提取RNA時(shí)應(yīng)在勻漿后離心，并加上以上操作步驟。