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突變變成癌細胞檢查原先核酸?五種新型基因甲基化酶檢查關(guān)鍵技術(shù)成效鮮為人知

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放大字體  縮小字體    發(fā)布日期:2021-06-17  來源:儀器網(wǎng)  作者:Mr liao  瀏覽次數(shù):48
核心提示:DNA甲基化是哺乳動物基因組中最常見的表觀遺傳事件之一,即DNA中核苷酸與甲基基團的共價修飾[2]。DNA甲基化與人的生命進程有著密不可分的關(guān)系。細胞的增殖與分化、染色體完整性的維護或者X染色體的活性等等都離不開DNA甲基化的控制,DNA甲

DNA甲基化是哺乳動物基因組中最常見的表觀遺傳事件之一,即DNA中核苷酸與甲基基團的共價修飾[2]。DNA甲基化與人的生命進程有著密不可分的關(guān)系。細胞的增殖與分化、染色體完整性的維護或者X染色體的活性等等都離不開DNA甲基化的控制,DNA甲基化流程在胚胎發(fā)育中是無處不在的[1]。如果DNA甲基化進程出現(xiàn)異常,會導(dǎo)致生物體出現(xiàn)各種各樣的疾病以及身體的生長缺陷或生理紊亂。DNA與蛋白質(zhì)之間的相互作用如果出現(xiàn)異常,會影響基因的表達,從而引起人體內(nèi)腫瘤的發(fā)生或者腫瘤的轉(zhuǎn)移,這一切的源頭都是DNA甲基化進程出現(xiàn)異常的結(jié)果[3]。


DNA甲基化酶是腫瘤治療靶點

DNA甲基化酶是一種修飾酶,經(jīng)常與限制性內(nèi)切酶一同出現(xiàn)。在真核生物基因組以及原核生物基因組中,普遍存在DNA甲基化酶維持以及催化DNA甲基化過程的現(xiàn)象。DNA甲基化酶被廣泛認為是一種治療靶點以及預(yù)測生物甲基化過程的標(biāo)志物,在單細胞水平上準(zhǔn)確靈敏地檢測DNA甲基化酶對于腫瘤醫(yī)學(xué)上的臨床診斷以及臨床治療甚至是生物學(xué)研究有著至關(guān)重要的作用。

根據(jù)甲基化的核苷酸和位置被分為三組,即腺嘌呤的甲基化、胞嘧啶的4-N甲基化和胞嘧啶的5-C甲基化。所有已知的DNA甲基化酶在其甲基化過程中以s-腺苷甲硫氨酸作為甲基供體。最常見的DNA甲基化不僅發(fā)生在胞嘧啶嘧啶環(huán)5-C位置的CpG位點上,還發(fā)生在對稱四核苷酸5’-G-A-T-C-3’ 中腺嘌呤環(huán)的6-N位置[4,5]。


傳統(tǒng)DNA甲基化酶檢測方法有局限 ?

DNA甲基化酶活性的高靈敏度檢測在基因調(diào)控、表觀遺傳修飾、臨床診斷和治療等方面具有重要意義。

傳統(tǒng)用于檢測DNA甲基化酶活性的方法包括高效液相色譜法(HPLC)[6], 聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)[7],凝膠電泳[8],高效毛細管電泳(HPCE)[9],以及使用同位素標(biāo)記的s-腺苷甲硫氨酸甲基化檢測[10,11]。盡管這些技術(shù)在實驗室實踐中被證明是有用的,但它們具有局限性。例如,大多數(shù)技術(shù)不僅使用笨重昂貴的設(shè)備,而且需要復(fù)雜的樣品制備和數(shù)據(jù)分析所需的大量時間。同位素標(biāo)記等技術(shù)是有效的,但它們往往需要費力的樣品制備、同位素標(biāo)記、復(fù)雜的設(shè)備和大量的DNA,使得它們不適合在醫(yī)護點使用。

所以,DNA甲基化酶活性檢測迫切需要簡單、便攜、高靈敏度和低成本的檢測方法。在最近的技術(shù)進步中,許多替代的DNA甲基化酶活性測定方法,如放射法、比色法、熒光法、電化學(xué)法等已被提出。此外,其中許多與納米材料或酶結(jié)合,以顯著提高它們的敏感性。


放射法、蛋白質(zhì)納米孔等新型檢測技術(shù)興起 ? ? ? ? ?

放射法:同位素標(biāo)記作為最早檢測DNA甲基化酶活性的方法之一,早期廣泛應(yīng)用于檢測DNA甲基化酶和DNA甲基化的活性[12,13]。在由DNA甲基化酶催化的甲基化過程中,同位素標(biāo)記的甲基部分轉(zhuǎn)移到DNA上,從而賦予甲基化的DNA放射性。這種放射性可以很方便地用閃爍計數(shù)器或放射自顯像儀來檢測??上У氖?,放射性試劑的介入是限制這種試驗在中央實驗室進行的最大缺點。對無輻射DNA甲基化酶活性檢測的研究導(dǎo)致了甲基化特異性PCR[14]、HPCE[9]和HPLC等替代品的發(fā)展[7,14],而甲基化特異性PCR被認為是較好的方法。盡管非放射性,上述DNA甲基化酶活性檢測需要龐大且通常昂貴的設(shè)備,冗長且耗時的樣品制備和數(shù)據(jù)分析,以及繁瑣的檢測方案,這在臨床實踐中也比較難以實現(xiàn)全覆蓋。

比色法:比色法用于DNA甲基化酶活性檢測依賴于顏色變化的目視觀察或與DNA甲基化酶相關(guān)的吸收光譜的光譜測量。它們具有成本低、簡單、可移植性和在某些情況下無需儀器的優(yōu)點。雖然紫外-可見光譜法可以量化DNA,但甲基化和未甲基化DNA在紫外-可見吸收特性上的低靈敏度和不顯著差異基本否定了紫外-可見光譜法直接檢測DNA甲基化酶活性[15~17]。

金納米粒子:金納米粒子(AuNPs)由于其表面的等離子體共振吸收的高消光系數(shù)且強依賴于粒子間距離,在DNA甲基化酶活性檢測的比色法研究中引起了廣泛關(guān)注。如圖1 所示,金納米粒子表面包覆有雙鏈DNA (ds-DNA),其中一條鏈包含DNA甲基化酶識別序列和5’-硫醇末端。在DNA甲基化酶存在的情況下,如圖1 B 所示,DNA甲基化酶被共價標(biāo)記在ds-DNA中堿基環(huán)的6-C位置,因為在5-N位置缺乏一個質(zhì)子阻止了β-消除,甲基化的DNA不能被核酸外切酶 ExoⅠ剪切,因此金納米粒子仍然均勻地分散在溶液中 [18]。從而實現(xiàn)DNA甲基化酶活性的檢測。結(jié)果表明,在526 nm處,金納米粒子聚集物的吸光度與DNA甲基化酶的活性呈2 ~ 32 U / mL的線性關(guān)系,檢出限為0.5 U / mL。

圖1. (A)基于ABP的比色生物傳感器的示意圖

(B) DNA甲基化酶的檢測機制

熒光法:熒光指吸收激發(fā)熒光團的光,以促進電子從基態(tài)到激發(fā)態(tài),電子迅速地回到激發(fā)態(tài)的最低能級,然后當(dāng)電子最終返回基態(tài)時,發(fā)出波長較長的光。與其他DNA甲基化酶活性測定法相比,熒光法檢測DNA甲基化酶活性的優(yōu)點是檢測過程簡單,靈敏度高,但其復(fù)雜的光學(xué)性能限制了其在集中實驗室的應(yīng)用[19~20]。

圖2. 基于外切酶的靶循環(huán)的DNA甲基化酶活性檢測原理圖

電化學(xué)法:電化學(xué)生物分析技術(shù)的發(fā)展一直是現(xiàn)代分析化學(xué)研究的熱點之一。電化學(xué)法用于DNA甲基化酶分析包括測量電流、電壓、電荷和電阻等電量,以反映DNA甲基化酶的活性。與許多其他類型的DNA甲基化酶活性的檢測相比,它們具有低成本、高靈敏度、執(zhí)行現(xiàn)場監(jiān)測的能力以及非常適合微型化和集成微制造技術(shù)的優(yōu)點[22~23]。

Zhi-Qiang Gao等人在2014年報道了一種簡單、高靈敏度的DNA甲基化酶電化學(xué)活性測定方法。該方法采用電催化氧化抗壞血酸(AA)的信號放大手段,通過一個螺紋插層N,N -2(3-丙基咪唑)-1,4,5,8-萘二酰亞胺(PIND)電催化氧化還原Os(bpy)2Cl+ (PIND-Os),包含5’-CCGG-3’ 對稱序列的ds-DNA首先固定在金電極上。然后用DNA甲基化酶孵育電極,經(jīng)過酶催化特定CpG二核苷酸的甲基化,然后用識別5’-CCGG-3’ 序列的限制性內(nèi)切酶 Hpa II 剪切酶處理電極,從而實現(xiàn)DNA甲基化酶活性檢測的目的[24]。

圖3. ?DNA甲基化酶活性的檢測原理示意圖

蛋白質(zhì)納米孔:蛋白質(zhì)納米孔檢測技術(shù)是在單分子水平上以低成本、無標(biāo)簽和高通量的方式研究生物分子的檢測技術(shù)。近年來,納米孔技術(shù)正從生物傳感的角度進行研究[25]。應(yīng)用于核酸特征鑒定、化學(xué)反應(yīng)過程的測量、蛋白質(zhì)分析、疾病相關(guān)蛋白狀態(tài)的檢測以及酶動力學(xué)的研究等[26]。α-溶血7素是一種蛋白質(zhì)納米孔,它自發(fā)地插入到脂質(zhì)雙層膜中,形成一個納米孔[27]。當(dāng)一個帶電分子在外加電勢下通過蛋白質(zhì)納米孔時,它會引起離子電流的瞬態(tài)變化,電流變化事件被記錄下來。被分析物可以通過當(dāng)前電流發(fā)生的頻率進行量化,特征電流信號則可以揭示被分析物的各種特征[28~30]。該檢測方法不需要對DNA探針進行任何化學(xué)修飾,既方便又節(jié)約成本,減少了樣品消耗。

圖4. 用于分析DNA甲基化酶活性的納米孔試驗的示意圖

?在過去的十幾年中,DNA甲基化酶活性的檢測取得了重大進展。有幾種方法有希望可在臨床檢測,使得該方法在用于癌癥診斷、預(yù)后和治療方面顯示出了希望。比色法依賴于顏色變化的目視觀察或與DNA甲基化酶相關(guān)的吸收光譜的光譜測量,具有成本低、簡單、可移植性和在某些情況下無需儀器的優(yōu)點,但是檢出限相對較高。熒光法檢測DNA甲基化酶活性的檢測過程簡單,檢出限相對理想,但其復(fù)雜的光學(xué)性能以及昂貴的儀器設(shè)備限制了其在生活中的應(yīng)用。電化學(xué)法由于需要構(gòu)建較復(fù)雜的反應(yīng)電極材料而使得其在臨床上受到了一定的限制。蛋白質(zhì)納米孔的檢測方法不需要對DNA探針進行任何化學(xué)修飾,既方便又節(jié)約成本,減少了樣品消耗,檢出限相對較為理想,并且已經(jīng)成功應(yīng)用于人類血清樣本。這類檢測可能最終為常規(guī)DNA甲基化酶活性的檢測和分子診斷打開大門,為疾病的管理和診斷帶來新的前景。


作者:王家海、駱 樂

作者簡介:王家海,博士,教授,碩士生導(dǎo)師/博士生導(dǎo)師,廣州大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院;分析化學(xué)專業(yè);主要研究領(lǐng)域為“基于核算納米結(jié)構(gòu)為信號傳導(dǎo)載體的納米孔傳感器”;在核酸探針和仿生納米孔兩方面開展了一系列分子識別的工作,也為將來進一步開展分析化學(xué)研究打下了堅實的基礎(chǔ),期間積累了多種前沿分析方法和技術(shù):仿生納米孔制備和檢測;微納米加工技術(shù);核酸探針人工合成技術(shù)。


參 ?考 ?文 ?獻

[1] 陳曉娟,閆少春,邵國,等.人DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的分類及其功能[J].包頭醫(yī)學(xué)院學(xué)報,2014,30(04):136-138.

[2] Das PM, et al. DNA methylation and cancer[J]. Clin. Oncol. 2004; 22: 4632-4642.

[3] Jurkowska RZ, et al. Structure and function of mammalian DNA methyltransferases[J]. ChemBioChem 2011; 12: 206-222.

[4] Lee GE, et al. DNA methyltransferase 1-associated protein (dmap1) is a co-repressor that stimulates DNA methylation globally and locally at sites of double strand break repair[J]. Biol. Chem. 2010; 285: 37630-37640.

[5] Liu SN, et al. Assay Methods of DNA Methylation and Their Applications in Cancer Diagnosis and Therapy[J]. Chinese J.Anal. Chem. 2011; 39: 1451-1458.

[6] Boye E, et al. Quantification of dam methyltransferase in Escherichia coli[J]. Bacteriol. 1992; 174: 1682-1685.

[7] Eads CA, et al. CpG island hypermethylation in human colorectal tumors is not associated with DNA methyltransferase overexpression[J]. Cancer Res. 1999; 59: 2302-2306.

[8] Bergerat A, et al. Allosteric and catalytic binding of s-adenosylmethionine to escherichia coli DNA adenine methyltransferase monitored by 3H NMR[J]. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1991; 88: 6394-6397.

[9] Fraga MF, et al. Rapid quantification of DNA methylation by high performance capillary electrophoresis[J]. Electrophoresis 2000; 21: 2990-2994.

[10] Yokochi T, et al. DMB (dnmt-magnetic beads) assay: measuring DNA methyltransferase activity in vitro[J]. Methods Mol. Biol. 2004; 287: 285-296.

[11] Adams RLP, et al. Microassay for DNA methyltransferase[J]. Biochem. Bioph. Methods 1991; 22: 19-22.

[12] Jurkowska RZ, et al. DNA methyltransferase assays[J]. Methods Mol. Biol. 2011; 791: 157-177.

[13] Pradhan S, et al. Recombinant human DNA (cytosine-5) methyltransferase [J]. Biol. Chem. 1999; 274: 33002-33010.

[14] Herman JG, et al. Methylation-specific PCR: a novel PCR assay for methylation status of CpG islands[J]. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1996; 93: 9821-9826.

[15] Kattenhorn, L. M.; Korbel, G. A.; Kessler, B. M.; Spooner, E.;Ploegh, H. L. Mol. Cell 2005, 19, 547?557.

[16] Mosammaparast, N.; Shi, Y. Annu. Rev. Biochem. 2010, 79, 155?179.

[17] Barglow, K. T.; Cravatt, B. F. Angew. Chem., Int. Ed. 2006, 45, 7408?7411.

[18] Wu Z, et al. Activity-based DNA-gold nanoparticle probe as colorimetric biosensor for DNA methyltransferase/glycosylase assay[J]. Anal. Chem. 2013; 85: 4376-4383.

[19] Zhu, C.; Wen, Y.; Peng, H.; Long, Y.; He, Y.; Huang, Q.; Li, D.;Fan, C. Anal. Bioanal. Chem. 2011, 399, 3459?3464.

[20] Chen, F.; Zhao, Y. Analyst 2013, 138, 284?289.

[21] Xing XW, et al. Sensitive detection of DNA methyltransferase activity based on exonuclease-mediated target recycling[J]. Anal. Chem. 2014; 86: 11269-11274.

[22] Wu, H.; Liu, S.; Jiang, J.; Shen, G.; Yu, R. Chem. Commun. 2012, 48, 6280?6282

[23] Wang, M.; Xu, Z.; Chen, L.; Yin, H.; Ai, S. Anal. Chem. 2012, 84, 9072?9078

[24] Deng H, et al. Highly sensitive electrochemical methyltransferase activity assay[J]. Anal. Chem. 2014; 86: 2117-2123.

[25] Howorka, S.; Siwy, Z. Nanopore Analytics: Sensing of Single Molecules. Chem. Soc. Rev. 2009, 38, 2360?2384.

[26] Song, L.; Hobaugh, M. R.; Shustak, C.; Cheley, S.; Bayley, H.; Gouaux, J. E. Structure of Staphylococcal α-Hemolysin, a Heptameric Transmembrane Pore. Science 1996, 274, 1859?1865.

[27] Lin, L.; Yan, J.; Li, J. Small-Molecule Triggered Cascade Enzymatic Catalysis in Hour-Glass Shaped Nanochannel Reactor for Glucose Monitoring. Anal. Chem. 2014, 86, 10546?10551.

[28] Li, J.; Yan, H.; Wang, K.; Tan, W.; Zhou, X. Anal. Chem. 2007, 79, 1050?1056.

[29] Wood, R. J.; Maynard-Smith, M. D.; Robinson, V. L.; Oyston, P. C. F.; Titball, R. W.; Roach, P. L. PLoS One 2007, 2, e801?e801.

[30] Wood, R. J.; McKelvie, J. C.; Maynard-Smith, M. D.; Roach, P. L. Nucleic Acids Res. 2010, 38, e107?e107.

[31] Jinghong Li, et al. Nanopore-based, label-free, and real-time monitoring assay for DNA methyltransferase activity and inhibition[J]. Anal. Chem. 2017; 89: 13252?13260.


 
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